Некоторые свойства рекомбинантных иерсиний с плазмидами pFra и pCad бактерий чумы

1.    Бибикова В.А., Классовский Л.Н., Осадчая Л.М. и др. О судьбе чумных и псевдотуберкулёзных бактерий в смешанных культурах //Журн. микробиол., эпидемиол., иммунол. — 1967.—№ 5. — С. 138—139.
2.    Бывалов А.А., Гаврилов К.Е., Крупин В.В. и др. Биологические и физико-химические свойства культур бактерий Yersinia pseudotuberculosis, несущих fra-оперон Yersinia pestis //Мол.генетика, микробиол., вирусол. — 2008. —№ 1. — С. 14—18.
3.    Вариабельность возбудителя чумы и проблемы его диагностики/  под ред. С.А. Лебедева, Ю.И. Арутюнов. — Ростов н/Д, 2009.— 533 с.
4.    Гольдфарб Л.М., Герасименко Р.Т., Пономарев Н.Г. и др. Характеристика энтерококков, выделенных от песчанок и изучение взаимоотношений возбудителя чумы и энтерококков //Пробл. особо опас. инф. — Саратов, 1972. — Вып. 5. — С. 114—117.
5.    Занина В.М., Таран И.Ф., Дмитриев В.Ф. и др. К изучению перекрёстного иммунитета при чуме и псевдотуберкулёзе грызунов //Пробл. особо опас. инф. —Саратов, 1977. — Вып. 3(55). — С. 68—69.
6.    Заплатина С.И., Хохлова А.М. Об иммунологическом родстве P.pestis и P.pseudotuberculosis //Тр. Ростовского н/Д н.-и. противочум. ин-та. — Ростов-на-Дону, 1959. — Т. XVI. — С. 97—104.
7.    Заренков М.И., Лебедева С.А. Tn-опосредованная мобилизация плазмидных детерминантов чумного микроба с помощью плазмиды pKA7 // Мол.генетика, микробиол., вирусол.—1986. —№ 5. — С. 16—20.
8.    Заренков М.И., Лебедева С.А., Гребцова Н.Н. и др. Способ трансдукции хромосомных маркеров и плазмид у чумного микроба: А.с. № 1304406 СССР. Заявка Ростовского—на-Дону противочумного института № 3858282/28-14. Приоритет от 25.02.1985.
9.    Колесник Р.С., Колесник В.С., Домарадский И.В. и др. Экспериментальные данные о способности некоторых псевдотуберкулёзных штаммов предохранять против интратрахеального заражения чумой //Пробл. особо опас. инф. — Саратов, 1968. — Вып. 4.— С. 114—120.
10.    Ларина В.С. Трансдукция стрепомицинрезистентности у чумного микроба с помощью умеренного фага Л-413 «С» //Пробл. особо опас. инф. — Саратов, 1969. — Вып. 610. — С. 104—106.
11.    Ларина В.С., Степанов В.С., Айкимбаев А.М. и др. О сложном симбиозе чумного микроба, сальмонелл и почвенных микроорганизмов. //Орг. Эпиднадзора при чуме и меры её проф.: Матер. межгос. науч.-практ. конф. —Алма-Ата, 1992. — Ч. 1. — С. 125—129.
12.    Лебедева С.А., Гуревич Г.К., Заренков М.И. и др. Трансдукция у Yersinia pestis, осуществляемая бактериофагами Р1vir и P1 cmlclr 100 ts //Мол. генетика, микробиол., вирусол. — 1984. —№ 2. — С. 17—19.
13.    Лешкович Н.Л. Ермилова В.П. О диапазоне и специфичности действия фагов 1701, 1710 и их мутантов //Пробл. особо опас. инф. — Саратов, 1974. — Вып. 2. — С. 38—41.
14.    Литвин В.Ю. Механизмы устойчивого сохранения возбудителя чумы в окружающей среде (Новые факты и гипотезы) //Журн. микробиол., эпидемиол., иммунобиол.— 1997. —№ 4. — С. 26—31.
15.    Никульшин С.В., Онацкая Т.Г., Луканина Л.М. и др. Изучение ассоциации почвенных амёб Hartmanella rhizoids c бактериями-возбудителями чумы и псевдотуберкулёза в эксперименте //Журн. микробиол., эпидемиол., иммунобиол. — 1992.—№ 9—10. — С. 2—5.
16.    Новосельцев Н.Н. Получение стрептомицинустойчивых рекомбинантов чумного микроба методом трансдукции //Пробл. особо опас. инф. — Саратов, 1970. — Вып. 1. — С. 98—100.
17.    Плотников О.П. Трансдуцирующая система на модели чумного и псевдотуберкулёзного микробов //Мол. биология и генетика возб. особо опас. инф. — Саратов, 1982. — Ч. 2. — С. 52—55.
18.    Пустовалов В.Л., Васильева Г.И., Киселёва А.К. Определение антифагоцитарной активности антигенов чумного микроба //Патол. физиол., иммунол и аллергол. особо опас. инф. — Саратов, 1984. — С. 8—12.
19.    Стрелков Р.Б. Статистические таблицы для экспресс-обработки экспериментального и клинического материала: методические рекомендации. — Обнинск, 1980. — 20 с.
20.    Тарасова В.Е., Инокентьева Т.И. Восприимчивость монгольской пищухи Тувы и Горного Алтая к псевдотуберкулёзу //Пробл. особо опас. инф. — Саратов, 1974. — Вып. 6(40). — С. 76—79.
21.    Трухачёв А.Л., Иванова В.С., Арсеньева Т.Е. и др. Поиск праймеров на основе хромосомной ДНК Yersinia pestis для эффективной ПЦР-идентификации типичных и атипичных штаммов возбудителя чумы // Клин. лаб. диагностика. — 2008. —№ 12. — C. 49—52.
22.    Хрусцелевская Н.М., Бибикова В.А., Сержанов О.С. Взаимоотношение возбудителя чумы с эризопелотриксами, пастереллами, листериями и сальмонеллами в организме блох, мышей и на питательных средах //Пробл. особо опас. инф. — Саратов, 1975. — Вып. 1(41). — С. 72—82.
23.    Шамова А.М. Случай выделения чумных и псевдотуберкулезных культур из грызунов на территории энзоотичного очага чумы //Изв. Иркут. н.-и. противочум. ин-та Сибири и Дальнего Востока. — Иркутск, 1959. — С. 63—67.
24.    Achtman M., Zurth R., Morelli G. et al. Yersinia pestis, the cause of plague, is a recently emerged clone of Yersinia pseudotuberculosis //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1999. — Vol. 96, N 24. — P. 14043—14048.
25.    Atkinson S., Goldstoun R.J., Joshua G.W.P. Biofilm development on Caenorhabditis elegans by Yersinia is facilitated by quorum sensing-dependent repression of type III secretion //PLoS Pathogen. — 2011. — Vol. 7.—Issue 1.e1001250.
26.    Azadech B., Sells P.G., Ejeckam G.C. et al. Lockalized leishmania lymphadenitis. Immunohistochemical studies //Am. J. Clin. Pathol. — 1994. — Vol. 102. — P. 11—15.
27.    Balada-Liasat J.M., Mecsas J. Yersinia has a tropism for B and T cell zones of lymph nodes that is independent of the type III secretion system //PLoS Pathogen. — 2006. — Vol. 2.—Issue 9.e86.
28.    Derbise A., Marı´n A.C., Ave P. et al. An encapsulated Yersinia pseudotuberculosis is a highly efficient vaccine against pneumonic plague //PLoS Neglected Tropical Diseases — 2012. —Vol. 6.—Issue 2. e1528.
29.    Lawton W.D., Fukui G.W., Surgalla M.G. Studies on the antigens of Pasteurella pestisand Pasteurella pseudotuberculosis //J. Immunol. — 1960. — Vol. 84, N 5. — P. 475—479.
30.    Lindler L.E., Plano G.V., Burland V. et al. Complete DNA sequence and detailed analysis of the Yersinia pestis KIM5 plasmid encoding murine toxin and capsulare antigen //Infect. Immun. — 1998. — Vol.66. — P.5731—5742.
31.    Monack D.M., Bouley D.M., Falkow S. Salmonella typhimurium persists with in macrophages in the mesenteric lymph nodes of chronically infected Nramp1+/+mice and can be reactivated by IFN{gamma} neutralization // J.Exp. Med. — 2004. — Vol. 199. — P. 231—241.
32.    Motin V.L., Georgescu A.M., Elliot J.M. et al. Genetic variability of Yersinia pestis isolates as predicted by PCR-based IS100 genotyping and analysis of structural genes encoding glycerol-3-phosphate dehydrogenase (glpD) // J. Bacteriol. — 2002. — V. 184, N. 4. — P. 1019—1027.
33.    Radnedge L., Agron, P.G., Worsham P.L. et al. Genomic plasticity in Yersinia pestis //Microbiology. — 2002. — Vol. 148. — P. 1687—1698.