мл. науч. сотр., Заведующий лабораторией корма и кормления рыб Научно-исследовательский институт рыбоводства, Республика Узбекистан, г. Ташкент
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МУКИ ЛИЧИНОК Hermetia illucens КАК ЗАМЕНЫ РЫБНОЙ МУКИ В РАЦИОНЕ КАРПА
АННОТАЦИЯ
Цель исследования заключалась в оценке влияния замены 50 % рыбной муки на муку из личинок Hermetia illucens в рационе карпа (Cyprinus carpio). Эксперимент проводился в течение 30 суток в бетонных бассейнах с двумя группами рыб: контрольная (T0) — с традиционным рационом, и опытная (T1) — с включением 50 % муки Hermetia illucens вместо рыбной муки. Анализировались ростовые, гематологические и биохимические показатели. Результаты показали, что у карпа группы T1 коэффициент конверсии корма был ниже (3,56 против 4,33 в T0), что указывает на более эффективное использование корма. В то же время в мышечной ткани T1 отмечено увеличение содержания белка (15,82 % против 14,92 %). Таким образом, включение муки Hermetia illucens может служить устойчивой альтернативой рыбной муке в аквакультуре Узбекистана.
ABSTRACT
The aim of the study was to evaluate the effect of replacing 50% of fish meal with Hermetia illucens meal in the diet of common carp (Cyprinus carpio). The experiment lasted for 30 days in concrete tanks with two groups of fish: the control group (T0) — fed a traditional diet, and the experimental group (T1) — with 50% of fish meal replaced by Hermetia illucens meal. Growth, hematological, and biochemical parameters were analyzed. The results showed that carp in group T1 had a lower feed conversion ratio (3.56 vs. 4.33 in T0), indicating more efficient feed utilization. At the same time, the muscle tissue of T1 fish showed an increased protein content (15.82% vs. 14.92%). Thus, the inclusion of Hermetia illucens meal can serve as a sustainable alternative to fish meal in aquaculture in Uzbekistan.
Ключевые слова: Cyprinus carpio, Hermetia illucens, рост, гематология, рацион.
Keywords: Cyprinus carpio, Hermetia illucens, growth, hematology, diet.
Введение. В современном аквакультурном производстве одним из ключевых факторов является поиск устойчивых и экономически выгодных источников белка для кормления рыб. Традиционно основным компонентом кормов служит рыбная мука, однако ее высокая стоимость и ограниченные ресурсы мирового рыболовства стимулируют необходимость поиска альтернативных источников белка [11,15,18].
В последние годы личинки черной львинки (Hermetia illucens) рассматриваются как перспективный белковый ингредиент для аквакультуры. Этот вид насекомых характеризуется высоким содержанием сырого протеина (40–65%) и липидов, а также сбалансированным аминокислотным и жирнокислотным составом, что делает его сопоставимым с рыбной мукой [6,5,13]. Ряд исследований показал, что использование муки H. illucens в рационе различных видов рыб, включая тиляпию, сома и радужную форель, положительно влияет на их рост, коэффициент конверсии корма и физиологические показатели [2,19,21,22].
Особый интерес представляет включение муки H. illucens в рационы карпа (Cyprinus carpio), одного из наиболее широко разводимых пресноводных видов в мировой аквакультуре. Исследования показали, что частичная или полная замена рыбной муки на муку черной львинки может способствовать улучшению роста, активности антиоксидантных ферментов, усвояемости питательных веществ и гистологического состояния тканей у карпа [7,9,20,23]. Например, при кормлении молоди карпа рационами с добавлением муки H. illucens отмечено повышение скорости прироста массы и улучшение иммунологических реакций [10,17,12]. Кроме того, использование белка насекомых рассматривается как экологически устойчивое решение, позволяющее снизить нагрузку на промысловые ресурсы и обеспечить развитие аквакультуры в условиях роста мирового спроса на рыбную продукцию [3,4,8,16]. Метанализы также подтверждают высокую питательную ценность насекомых в качестве ингредиента аквакормов [11].
Таким образом, изучение влияния замены рыбной муки на муку Hermetia illucens в рационе карпа представляет значительный научный и практический интерес. Несмотря на то, что использование H. illucens в кормлении различных видов рыб активно исследуется за рубежом, в условиях Узбекистана данный вопрос остаётся недостаточно изученным и требует дополнительных исследований.
Цель настоящего исследования — оценить влияние включения в рацион карпа муки Hermetia illucens в количестве 50 % от массы рыбной муки на ростовые, кормовые, химический состав мышечной ткани и гематологические показатели при бассейновом выращивании.
Материалы и методы
Исследования проводились в опытных бетонных бассейнах лаборатории «Корм и кормление рыб» Ташкентского областного научно-исследовательского института рыбоводства.
2.1. Получение и химический состав муки из личинок Hermetia illucens
В качестве заменителя рыбной муки использовалась мука из личинок чёрной львинки (Hermetia illucens), выращенной в инсектарии института. Личинок откармливали пшеничными отрубями при влажности субстрата 70–75 %. Для переработки отбирались 11-дневные личинки, прошедшие шестидневный откорм. Общая масса собранной сырой биомассы составила 50 кг.
Перед сушкой личинок выдерживали в течение 24 ч без корма, затем промывали проточной водой и подвергали термической обработке при 100 °С в течение 30 минут. Сушка осуществлялась в барабанной сушилке (12 л) при 100–130 °С на протяжении 1,5 ч при скорости вращения 35 об/мин. Высушенный материал дополнительно досушивали на солнце, после чего измельчали на комбикормовой мельнице. Из 50 кг живой массы было получено в среднем 11,4 ± 0,067 кг сухого продукта.
Химический состав продукта анализировали с использованием спектроскопического анализатора Sup NIR 2750 (рис.1 и таб.1). Полученная мука включалась в состав опытных рационов карпа.
Таблица 1.
Химический состав муки из личинок Hermetia illucens
|
Показатели |
Значение (%) |
|
Влажность |
3,89±0,05 |
|
Сырой протеин |
42,42±0,13 |
|
Сырой жир |
13,06±0,37 |
|
Клечатка |
4,93±0,12 |
|
Сыра зола |
15,30±0,005 |
|
Ca |
4,80±0,07 |
|
P |
1,27±0,005 |
2.2. Рецептура корма.
Экспериментальные корма были приготовлены с использованием полученной муки H. illucens и традиционных ингредиентов местного происхождения. Гранулирование проводилось на экструдере W-70, что позволило получать плавающий корм (табл. 2–3).
Таблица 2.
Состав рационов для карпа (Cyprinus carpio) с разным уровнем включения муки Hermetia illucens
|
Ингредиенты |
0% ЧЛ (Контрол) |
50% ЧЛ |
|
Кукурузная мука |
30,0 |
30,0 |
|
Рыбная мука |
30,0 |
15,0 |
|
Мука ЧЛ |
0 |
15,0 |
|
Рисовые отруби |
10,0 |
10,0 |
|
Соя |
10,0 |
10,0 |
|
Мясокостная мука |
2,0 |
2,0 |
|
Пшеничные отруби |
18,0 |
18,0 |
|
Всего |
100 |
100 |
Таблица 3.
Химический состав рационов для карпа
|
Показатели |
100% корм РМ |
Корм с добавлением 50% ЧЛ |
|
Влажность |
2,54±0,01 |
3,05±0,01 |
|
Сырой протеин |
24,85±1,53 |
25,66±0,96 |
|
Сырой жир |
12,86±2,54 |
12,63±2,50 |
|
Клечатка |
4,10±0,08 |
3,84±0,07 |
|
Сыра зола |
5,53±2,32 |
5,84±2,36 |
|
Ca |
1,28±0,93 |
1,30±1,0 |
|
P |
2,08±0,77 |
2,11±0,81 |
2.3. Экспериментальный дизайн.
Двухлетние особи карпа (Cyprinus carpio), полученные в институте от украинских родительских форм, до начала эксперимента содержались на стандартном рационе без добавления муки личинок чёрной львинки (ЧЛ0). Для проведения опыта рыбы были равномерно распределены по 6 бетонным бассейнам размером 6 × 1 × 0,5 м, по 20 особей в каждом. Условия воды поддерживались стабильными: температура 24–26 °C, содержание растворённого кислорода 6.8±0.2 мг/л, минерализация 0,28 г/л, общая жёсткость 7,2 мг-экв/л, pH — 7,3±0,2. Рыб кормили вручную на протяжении 30 суток из расчёта 4,5 % от массы тела трижды в день (08:00, 12:00 и 17:00). Для расчёта исходных средних показателей были измерены длина (18,02± 3,89) и масса (303,33 ± 28,88) у 20 случайно отобранных рыб.
2.4. Измерение показателей роста рыбы.
- Среднесуточную скорость роста рыб вычисляли по формуле[2]:
(А = [(mk/mо )1/т – 1] x 100 (%)) (1) ;
где mк и mо – масса рыбы в конце и в начале опыта; t - продолжительность опыта, сут.
- Среднесуточный прирост рыб вычисляли по формуле:
(Рср.сут. = (mk – mo)/t)) (2) ;
где mк – конечная масса молоди, грамм; m0 – начальная масса молоди, грамм; t – продолжи-тельность опыта, сут.
- Абсолютный прирост [12]:
(WG;g) = W2 – W1 (3);
где mк – конечная масса молоди, грамм; m0 – начальная масса молоди, грамм.
где mк – конечная масса молоди, г; m0 – начальная масса молоди, г.
- Для более точного определения скорости роста вычисляли коэффициент массонакопления [2]:
Км = ((Мк1/3– Мо1/3) * 3) / t (4);
где Км – общий продукционный коэффициент скорости роста; Мк и Мо – конечная и начальная масса рыбы, г; t – время выращивания, сут.
- Выживаемость рыб вычисляли по формуле [12]:
(5);
- Коэффициент конверсии корма[7,8,12,21]:
(6);
- Общую длину тела рыбы определяли по следующей формуле[]:
Laб (см) = lк – lн (7);
lк - конечная длина, lн — начальная длина.
2.5. Определение гематологических показателей рыб.
Гематологические параметры карпа определяли стандартными методами. Концентрацию гемоглобина измеряли с использованием гемометра Сали, а количество эритроцитов и лейкоцитов подсчитывали в камере Горяева. Гематокритное число определяли методом центрифугирования с последующим измерением соотношения объема эритроцитов к общему объему крови с помощью миллиметровой линейки, результат выражали в % [1].
2.6. Определение химического состава мышечной ткани карпа (Cyprinus carpio).
Содержание влаги определяли по методу AOAC 930.15. Пробы анализировали в трехкратной повторности. Образцы мышечной ткани карпа высушивали в сушильном шкафу при температуре 130 °C в течение 2 часов, после чего охлаждали в эксикаторе и повторно взвешивали для расчёта потерь влаги.
Зольность определяли по методу AOAC 942.05. Для этого пробы подвергали озолению в муфельной печи при температуре 700 °C в течение 2 часов, охлаждали и взвешивали для вычисления остаточного количества золы.
Содержание сырого протеина устанавливали по методу Кьельдаля (ISO 1871), также в трехкратной повторности. Определение включало этапы минерализации с использованием серной кислоты, дистилляции и последующего титрования. Содержание белка рассчитывали путём умножения значения общего азота на коэффициент 6,25.
Все измерения проводили в трёх повторностях. Результаты представлены как среднее значение ± стандартная ошибка (M ± SE). Для выявления достоверных различий применялся статистический анализ с использованием программы Microsoft Excel. Различия считались статистически значимыми при p < 0,05.
2.7. Статистический анализ.
Все полученные данные подвергались дисперсионному анализу (ANOVA) с использованием MS Excel 2016. Различия считались значимыми при p < 0,05.
Результаты. Анализ рыбоводно-биологических показателей карпа показал, что начальная масса и длина особей в контрольной и опытной группах были одинаковыми (303,33±14,35 г и 18,02±0,98 см соответственно). В течение 30-дневного эксперимента конечная масса карпа в контрольной группе достигла 435±25,16(T0) г, что несколько выше по сравнению с опытной группой (T1 401,66±28,03 г). Однако различия не были статистически значимыми (p>0,05). Абсолютный и среднесуточный прирост в обеих группах составил 115 г и 3,96 г/сут. соответственно. Среднесуточная скорость роста (SGR) в опытной группе составила 0,057 %, что выше, чем в контроле (0,050 %). При этом коэффициент кормовой конверсии (FCR) был значительно ниже в опытной группе ( T1 - 3,56 против T0 - 4,33), что указывает на более эффективное использование корма. Выживаемость рыб в обеих группах составила 100 % (табл. 4).
Таблица 4.
Рыбоводно-биологические показатели выращивания карпа
|
Показатели |
Группа рыб |
|
|
Контроль T0 |
Опыт T1 |
|
|
M±SE |
M±SE |
|
|
Масса начальная, г |
303.33±14.35 |
303.33±14.35 |
|
Масса конечная, г |
435±25.16 |
401.66±28.03 |
|
Длина начальная, см |
18.022±0.98 |
18.022±0.98 |
|
Длина конечная, см |
25.68±0.57 |
25.98±0.95 |
|
Абсолютный прирост, г |
115±22.54 |
115±2.88 |
|
Среднесуточный прирост, г |
3.96±0.77 |
3.96±0.09 |
|
Среднесуточная скорость роста, (SGR)% |
0.050±0.008 |
0.057±0.004 |
|
Коэффициент массонакопления, ед. |
0.001 |
0.0107 |
|
Кормовой коэффициент(FCR) |
4.33±0.92 |
3.56±0.33 |
|
Выживаемость, % |
100 |
100 |
|
Продолжительность эксперимента, сут. |
30 |
30 |
Примечание. Достоверных различий между группами не выявлено (p > 0,05).
При оценке гематологических показателей установлено, что концентрация гемоглобина в опытной группе была ниже T1(74,3 г/л), чем в контролеT0 (88 г/л). Количество эритроцитов в опытной группе также уменьшилось (0,51±0,19 против 0,85±0,28), тогда как уровень лейкоцитов, напротив, увеличился (37,95±5,04 против 23,65±4,58). Гематокритное число оказалось ниже у рыб опытной группы (25,46 % против 40,24 % в контроле), что может указывать на физиологическую реакцию на изменение рациона (табл. 5).
Таблица 5.
Гематологических показателей рыб
|
Группа рыб |
Гемоглобин, г/л |
Эритроцит |
Лейкоцит |
Гемотакрит,% |
|
Контроль |
88±0,20 |
0,85±0.28 |
23,65±4.58 |
40,24±7,65 |
|
Опыт |
74,3±0,12 |
0,51±0,19 |
37,95±5.04 |
25,46±1,64 |
Примечание. Достоверных различий между группами не выявлено (p > 0,05).
Анализ химического состава мышечной ткани показал, что в опытной группе наблюдалось увеличение влажности (T1 - 77,39±2,93 % против T0 -72,61±4,10 % в контроле) и содержания сырого протеина (T1 - 15,82±0,62 % против T0 - 14,92±0,66 %), в то время как содержание сырой золы достоверно отличалось (T1 - 1,63 % против T0 - 1,58 %, p<0,05) (табл. 6).
Таблица 6.
Биохимический состав мышечной ткани карпа
|
Показатели |
Контроль |
Опыт |
|
Влажность |
72,61±4,10а |
77,39±2,93а |
|
Сырой протеин |
14,92±0,66а |
15,82±0,62а |
|
Сырая зола |
1,58±0,00а |
1,63±0,00b |
Примечание. Значения представлены как M ± SE. Разные надстрочные буквы (a, b) в пределах одной строки указывают на достоверные различия при p < 0,05.
Обсуждение.
Полученные результаты демонстрируют, что частичная замена рыбной муки на муку личинок Hermetia illucens (50 %) в рационе карпа не оказала отрицательного влияния на основные рыбоводно-биологические показатели. Несмотря на то, что конечная масса рыб опытной группы была немного ниже контрольной, такие показатели, как среднесуточная скорость роста (SGR) и коэффициент кормовой конверсии (FCR), оказались более благоприятными у рыб, получавших рацион с мукой насекомых. Подобные результаты подтверждаются данными других исследований, где использование H. illucens повышало эффективность кормления и снижало коэффициент конверсии корма у различных видов рыб [7,15, 21].Изменения гематологических параметров указывают на то, что включение муки из личинок H. illucens влияет на обмен веществ и иммунные реакции рыб. Снижение уровня гемоглобина и эритроцитов в опытной группе может быть связано с особенностями аминокислотного состава белка насекомых и наличием хитина, который оказывает влияние на усвояемость [2,11]. При этом возрастание уровня лейкоцитов свидетельствует о возможной активации неспецифических защитных механизмов организма, что согласуется с результатами исследований на тиляпии и форели [21,22].
Анализ химического состава мышечной ткани показал, что добавление муки H. illucens способствует накоплению белка в мышцах, что является положительным результатом. Похожие данные были получены в исследованиях на ювенильном карпе и африканском клариевом соме, где включение муки H.illucens в рацион приводило к улучшению мясных характеристик и увеличению протеинового содержания [8, 14, 20, 23].
Таким образом, наши результаты согласуются с выводами ряда авторов о том, что мука личинок Hermetia illucens является перспективным белковым ингредиентом, который может частично заменять рыбную муку без ухудшения роста и мясных качеств рыб [3, 4, 5, 6, 12].
Заключение.
Включение в рацион карпа 50 % муки из личинок Hermetia illucens вместо рыбной муки обеспечивает более эффективное использование корма и способствует повышению белкового содержания мышечной ткани. Полученные результаты подтверждают возможность применения муки Hermetia illucens как устойчивой альтернативы рыбной муке в аквакультуре Узбекистана.
Список литературы:
- Пищенко Е.В. Гематология пресноводной рыбы: Учебное пособие. // Новосиб. гос. аграр. ун-т. – Новосибирск. 2002. – C. 42.
- Ушакова Н.А., Пономарев С.В., Федоровых Ю.В., Бастраков А.И. Использование протеин-хитинового концентрата личинок черной львинки Hermetia illucens в рационе всеядных рыб на примере красной тиляпии // Известия Уфимского научного центра РАН. – 2018. – № 3. – С.57–62. DOI: 10.31040/2222-8349-2018-0-3-57-62.
- Albayati Ahmed I., Attee R.S., Al-Khshali M.S. Effect of replacing soybean meal with larvae meal of black soldier fly Hermetia illucens in growth performance and some biochemical blood parameters of common carp cyprinus carpio l. – 2025. – Pp. 92–97 DOI:10.36103/n4w5sv22.
- Albayati Ahmed I., Attee R.S., Al-Khshali M.S. Effect of Replacing Animal Protein Concentrate with Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae Meal in Growth Performance and Some Blood Parameters of Common Carp (Cyprinus carpio L.). // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. – 2025. – 1487. – 012165. DOI:10.1088/1755-1315/1487/1/012165.
- Barragan-Fonseca K.B., Dicke M., van Loon J.J.A. Nutritional Value of the Black Soldier Fly (Hermetia illucens L.) and Its Suitability as Animal Feed—A Review // Journal Insects Food Feed. – 2017. – Pp.105–120.
- Deren O., Bernakevych O., Bobeliak L., Hrytsyshyna N., Koryliak M. Results of replacing fish meal with insect protein in carp feeds // Ribogospodarsʹka nauka Ukraïni. – 2024. – Pp. 145–164. DOI: 10.61976/fsu2024.04.145.
- Doğan H., Turan, F. The usage of Black Soldier Fly (Hermetia illucens) larvae meal as alternatıve protein source in carp diets (Cyprinus carpio) // Acta Aquatica Turcica. – 2021. – Vol. 17(4). – Pp. 508–514.
- Hervé M.K., Calice M.D., Dzepe D. et al. Black soldier fly (Hermetia illucens) larvae improve growth performance and flesh quality of African catfish (Cyprinus carpio) // Discov Anim. – 2025. – Vol. 2 (9). DOI:10.1007/s44338-024-00045-8.
- Jahan Raunak & Tipu, Mohammad & Haque, Mohammad & Salam, Md. Black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal as a fish meal replacement in diets for nursing common carp (Cyprinus carpio) fry. // agriRxiv. – 2021. DOI:10.31220/agriRxiv.2021.00030.
- Lariman, Lariman & Nabilah, Intan & Patang, Fatmawati. Effect of Feeding Black Soldier Fly Larvae (Hermetia illucens Linnaeus, 1758) and Commercial Feed on the Growth Rate of Common Carp (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) // International Journal of Research and Scientific Innovation. – 2024. – Pp. 456–461. DOI: 10.51244/IJRSI.2023.1012034.
- Liland N.S., Araujo P., Xu X.X., Lock E.-J., Radhakrishnan G., Prabhu A.J.P., Belghit I. A Meta-Analysis on the Nutritional Value of Insects in Aquafeeds // Journal of Insects Food Feed. – 2021. – Pp.743–760.
- Linh N.V., Wannavijit S., Tayyamath K., Dinh-Hung N., Nititanarapee T., Sumon M. A. A., Srinual O., Permpoonpattana P., Doan H.V., Brown C.L. Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae Meal: A Sustainable Alternative to Fish Meal Proven to Promote Growth and Immunity in Koi Carp (Cyprinus carpio var. koi) // Fishes. – 2024. – Vol. 9(2). – Pp. 53. DOI: 10.3390/fishes9020053.
- Lopez Z.P., Purnamasari L., dela Cruz J.F. A review: Evaluation of Black Soldier Fly (Hermetia illucens) larvae meal as a dietary protein source in poultry diets // Journal of Tropical Biology. – 2022. – Vol. 10 (3). – Pp.191–202.
- Maranga B., Kagali R.N., Mbogo K., Orina P.S., Munguti J.M., Ogello E. Growth Performance of African Catfish (Cyprinus carpio) Fed on Diets Containing Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae Under Aquaponic System. // Aquaculture Studies. – 2022.
- Mohan K., Rajan D.K., Muralisankar T., Ganesan A.R., Sathishkumar P., Revathi N. Use of black soldier fly (Hermetia illucens L.) larvae meal in aquafeeds for a sustainable aquaculture industry: a review of past and future needs. // Aquaculture. – 2022. – Vol. 553: 738095. DOI:10.1016/j.aquaculture.2022.738095
- Mundida, G.B., Manyala, J.O., Madzimure, J., & Rono, K. Growth and Economic Performance of African Catfish (Cyprinus carpio Burchell, 1822) Fed Diets Containing Black Soldier Fly Larvae (Hermetia illucens Linnaeus, 1758). // East African Journal of Agriculture and Biotechnology. – 2023.
- Pradana, Hengki & Prajitno, Arief & Maftuch, Maftuch. Effect of Maggot Flour (Hermetia illucens larvae) on Histopathology of Koi carp (Cyprinus carpio) Muscles and Gills Infected with Edwarsiella tarda // Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan. – 2022. – Vol. 14. Pp. 246-259. 10.20473/jipk.v14i2.34532.
- Rui Magalhães, Antonio Sánchez-López, Renato Silva Leal, Silvia Martínez-Llorens, Aires Oliva-Teles, Helena Peres, Black soldier fly (Hermetia illucens) pre-pupae meal as a fish meal replacement in diets for European seabass (Dicentrarchus labrax). // Aquaculture. – 2017. – Vol. 476. Pp. 79 85. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.04.021.
- Sanjaya Y., Nilawati T.S., Suhara, Kurniawan W., Ramadhan D.K. The use of black soldier fly (Hermetia illucens) maggot as an alternative food for catfish (Cyprinus carpio) // Journal of Entomological Research. – 2024.
- Senlin Li, Hong Ji, Binxin Zhang, Jishu Zhou, Haibo Yu, Defatted black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal in diets for juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian): Growth performance, antioxidant enzyme activities, digestive enzyme activities, intestine and hepatopancreas histological structure // Aquaculture. – 2017. – Vol. 477. – Pp. 62–70. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.04.015.
- Tippayadara N., Dawood M.A.O., Krutmuang P., Hoseinifar S.H., Van Doan H., Paolucci M. Replacement of Fish Meal by Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae Meal: Effects on Growth, Haematology, and Skin Mucus Immunity of Nile Tilapia, Oreochromis Niloticus // Animals. – 2021. – Vol. 11. – Pp.193.
- Uslu A.A., Özel O.T., Örnekçi G., Çelik B., Çankırılıgil E.C., Co¸skun I., Uslu ¸Senel G. Insect Larval Meal as A Possible Alternative to Fish Meal in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Diets: Black Soldier Fly (Hermetia illucens), Mealworm (Tenebrio molitor) // Journal of Limnology Freshwater Fish Resume. – 2023. – Vol. 9. – Pp. 43–52.
- Xinxin, Xu & Yu, Haibo & Zhou, Jishu. Influence of dietary black soldier fly ( Hermetia illucens Linnaeus) pulp on growth performance, antioxidant capacity and intestinal health of juvenile mirror carp ( Cyprinus carpio var. specularis) // Aquaculture Nutrition. – 2020. – Vol. 26. DOI: 10.1111/anu.13005.