преподаватель Запорожского национального университета, Украина, г. Запорожье
Роль ионов Zn2+ в функциональных изменениях слизистой оболочки дистального отдела тонкого кишечника при действии диклофенака
АННОТАЦИЯ
Функциональные изменения слизистой оболочки дистального отдела тонкой кишки, сопровождающие воспалительную реакцию, индуцированную диклофенаком (снижение концентрации цинка в ткани кишечника, ульцерогенез, увеличение проницаемости эпителия, дисбаланс оксидантно-антиоксидантной системы, повышенная секреторная активность клеток Панета и дисбаланс микрофлоры), носят обратимый кратковременный характер. Модуляция трансмембранного транспорта ионов ионов Zn2+ при действии диклофенака приводит к значительно более выраженным и длительным изменениям слизистой оболочки дистального отдела тонкой кишки.
ABSTRACT
Functional changes of the mucous membrane of the distal small intestine, accompanying inflammatory reaction induced by diclofenac (decrease in the concentration of zinc in the intestinal tissue, ulcerogenesis, increasing the permeability of the epithelium, the imbalance of the oxidant-antioxidant system, increased secretory activity of Paneth cells and microflora imbalance) are short-term and reversible. Modulation of transmembrane transport of Zn2 + ions by the action of diclofenac leads to a much more pronounced and long-term changes of the mucous membrane of the distal small intestine.
Список литературы:
1. Автандилов Г.Г. Введение в количественную патологическую морфологию. — М.: Медицина, 1980. — 216 с.
2. Ермаков А.И., Арасимович В.В., Ярош Н.П. Методы биохимического исследования растений. — Л.: Агропромиздат, 1987. — C. 41—45.
3. Ещенко В.А. Гистохимическое исследование цинка // Цитология. — 1978. — № 8. — с. 927—933.
4. Кополадзе Р.А. Регламентация экспериментов на животных — этика, законодательства, альтернативы // Успехи физиологических наук. — 1998. — Т. 29. — № 4. — с. 74—89.
5. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г. и др. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. — 1988. — № 1. — с. 16—19.
6. Метельская В.А., Гуманова Н.Г. Скрининг-метод определения уровня метаболитов оксида азота в сыворотке крови // Клиническая лабораторная диагностика. — 2005. — № 6. — с. 15—18.
7. Методы биохимического анализа растений / под ред. В.В. Полевой, Г.Б. Максимова. — Л.: изд-во Ленингр. ун-та. — 1978. — 192 с.
8. Новицкий В.В. Ещенко Ю.В., Бовт В.Д. и др. Содержание цинка в клетках Панета и предстательной железы при действии хелатирующих и стрессовых факторов // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. — 2011. —№ 8. — С. 140—143.
9. Полесская О.Г., Каширина Е.И., Алехина Н.Д. Изменение активности антиоксидантных ферментов в листьях и корнях пшеницы в зависимости от формы и дозы азота в среде // Физиология растений. — 2004. — Т. 51. — с. 686—691.
10. Способ определения катионных белков в клетках : пат. 65514 Украина. № u200701472 ; заявл. 12.02.11 ; опубл. 27.08.07, Бюл. № 13. — 3 с.
11. Эпштейн-Литвак Р.В. Бактериологическая диагностика дисбактериоза кишечника : методические рекомендации. — М., 1977. — 20 с.
12. Янковский Д.С. Микробная экология человека: современные возможности ее поддержания и восстановления. — К.: Эксперт ЛТД, 2005. — 362 с.
13. Atchison C.R., West A.B., Balakumaran A. Drug enterocyte adducts: Possible causal factor for diclofenac enteropathy in rats // Gastroenterology. — 2000. — V. 119. — № 6. — P. 1537—1547.
14. Cousins R.J., Blanchard R.K., Popp M.P. A global view of the selectivity of zinc deprivation and excess on genes expressed in human THP-1 mononuclear cells // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. — 2003. — V. 100. — № 12. — P. 6952—6957.
15. Economou M., Pappas G. New global map of Crohn's disease: Genetic, environmental, and socioeconomic correlations // Inflamm. Bowel Dis. — 2008. — V. 14. — № 5. — P. 709—720.
16. Fukada T., Civic N., Furuichi T. The zinc transporter SLC39A13/ZIP13 is required for connective tissue development; its involvement in BMP/TGF-beta signaling pathways // PLoS One. —2008. — V. 3. — № 11. — P. 3642—3648.
17. Homsher R., Zak B. Spectrophotometric investigation of sensitive complexing agents for the determinationof zinc in serum // Clin. chem. — 1985. — V. 31. — № 8. — Р. 1310—1313.
18. Hunter C.J. Singamsetty V.K., Chokshi N.K. Enterobacter sakazakii enhances epithelial cell injury by indusing apoptosis in a rat model of necrotizing enterocolotis // J. Inf. Dis. — 2008. — V. 198. — № 4. — P. 586—593.
19. Izumi Y., Ogino K., Murata T. Effects of diethyldithiocarbamate on activating mechanisms of neutrophils // Pharmacol. Toxicol. —1994. — V. 74. —
№ 4—5. — P. 280—286.
20. Khansari N., Shakiba Y., Mahmoudi M. Chronic Inflammation and Oxidative Stress as a Major Cause of Age-Related Diseases and Cancer // Recent Pat. Inflamm. Allergy Drug Discov. — V. 3. — № 1. — Р. 73—80.
21. Lange S., Delbro D.S., Jennische E. Evans blue permeation of intestinal mucosa in the rat // Scand. J. Gastroenterol. — 1994. — V. 29. — № 1. — P. 38—46.
22. Stadnickia R., Sartorc B., Janardhamc R. Kallikrein-kininogen system activation and bradykinin (B2) receptors in indomethacin induced enterocolitis in genetically susceptible Lewis rats // Gut. — 1998. — V. 43. — P. 365—374.
23. Teitelbaum A.A., Gareau M.G., Jury J. Chronic peripheral administration of corticotropin-releasing factor causes colonic barrier dysfunction similar to psychological stress // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. — 2008. — V. 295. — P. 452—459.
24. Zhou H., Zhang T., Harmon J.S. Zinc, Not Insulin, Regulates the Rat α-Cell Response to Hypoglycemia In Vivo // Diabetes. — 2007. — V. 56. — № 4. — P. 1107—1112.