аспирант Федерального государственного автономного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Белгородский государственный национальный исследовательский университет», РФ, г. Белгород
Исследование подвижности гемоцитов Gromphadorhina portentosa
АННОТАЦИЯ
Исследована подвижность гемоцитов Gromphadorhina portentosa при инкубации в различных условиях. Отмечены морфологические изменения форменных элементов гемолимфы при выполнении ими фагоцитарных функций. Показано, что интенсивность флуоресценции гемоцитов при наличии инородных объектов в среде увеличивается. Усиление флуоресценции гемоцитов позволяет говорить о высокой потребности в энергии для распознавания инородных объектов и участия в фагоцитозе.
ABSTRACT
Gromphadorhinaportentosa hemocytes motility has been studied in the presence of incubation in various conditions. Morphological changes of hemolymph formed elements are distinguished in performing phagocytic functions. It is testified that fluorescence intensity of hemocytes increase having heterogeneous objects in the environment. The fluorescence intensity allows us to speak about high energy requirements to recognize heterogeneous objects and to participate in phagocytosis.
Список литературы:
1. Гребцова Е.А., Присный А.А. Определение мембранного резерва гемоцитов Periplaneta americana и Blaberus craniifer и изучение влияния гипоосмотической нагрузки на объем клеток // Научные достижения биологии, химии, физики: тезисы докл. межд. заочной науч.-практ. конференции. (г. Новосибирск, 7 ноября 2012 г.). — Новосибирск, 2012. — с. 51—56.
2. Метод морфофункциональной оценки клеточного компонента биотрансплантатов: пат. 2484472 Рос. Федерация; опубл.10.06.2013.
3. Holz A., Bossinger B., Strasser T., Janning W., Klapper R. The two origins of hemocytes in Drosophila // Development. 2003. V. 130. P. 55—62.
4. Johnson L.V., Walsh M.L., Bockus B.J., Lan Bo Chen. Monitoring of relative mitochondrial membrane potential in living cells by fluorescence microscopy// The journal of cell biology. 1981. V. 88. P. 526—535.
5. Lanot R., Zachary D., Holder F., Meister M. Postembryonic hematopoesis in Drosophila // Dev. Biol.2001. V. 230. P. 243—257.
6. Perry S.W., Norman J.P., Barbieri J., Brown E.B., Gelbard H.A. Mitochondrial membrane potential probes and the proton gradient: a practical usage guide // Biotechniques. 2011.V. 50(2). P. 98—115.
7. Russell C., Scaduto Jr., Grotyohann L.W. Measurement of mitochondrial membrane potential using fluorescent rhodamine derivatives // Biophysical Journal. 1999. V. 76. P. 469—477.