Susceptibility of Staphylococcus aureus biofilms to arylaliphatic aminoalcohols

This article is available in Russian only.

Dronova Maria

12.12.2015 2486

No. 2 (15)

43. Chemotherapy and antibiotics

Цитировать:

Дронова М.Л. Чувствительность биопленок Staphylococcus aureus к действию производных арилалифатических аминоспиртов // Universum: медицина и фармакология : электрон. научн. журн. 2015. № 2 (15). URL: https://7universum.com/en/med/archive/item/1932 (дата обращения: 29.05.2026).

Прочитать статью:

Keywords: biofilms, Staphylococcus aureus, arylaliphatic aminoalcohols

АННОТАЦИЯ

Впервые синтезированные производные арилалифатических аминоспиртов проявляют выраженную активность по отношению к биопленкам золотистого стафилококка. Соединения способны как разрушать сформированную молодую биопленку, так и препятствовать её образованию. По степени ингибирующего эффекта производные арилалифатических аминоспиртов имеют преимущества перед препаратом сравнения цефтриаксоном и не уступают ципрофлоксацину.

ABSTRACT

The novel derivatives of arylaliphatic aminoalcohols exhibit significant activity against Staphylococcus aureus biofilms. Compounds are able to destroy young biofilm and prevent its formation. The derivatives of arylaliphatic aminoalcohols possess more pronounced activity than ceftriaxone and equal or higher activity comparatively to ciprofloxacin.

Список литературы:

1.   Бережанский Б.В., Жевнерев А.А. Катетер-ассоциированные инфекции кровотока // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. — 2006. — Т. 8, № 2. — С. 130—144.
2.   Голуб А.В. Бактериальные биопленки — новая цель терапии? // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. — 2012. — Т. 14, № 1. — С. 23—29.
3.   Гостев В.В., Сидоренко С.В. Бактериальные биопленки и инфекции // Журнал инфектологии. — 2010. — Т. 2, № 3. — С. 4—15.
4.   Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам [Методические указания МУК 4.2.18-90-04] // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. — 2004. — Т. 6, № 4. — С. 306—359.
5.   Романова Ю.М. Образование биопленок — пример социального поведения бактерий // Микробиология. — 2006. — Т. 75, № 4. — С. 556—661.
6.   Сидоренко С.В. Инфекции, связанные с центральным венозным катетером // Инфекции и антимикроб. химиотер. — 2001. — Т. 3, № 2. — С. 47—49.
7.   Чеботарь И.В. Антибиотикорезистентность биоплёночных бактерий // Клин. микробиол. Антимикроб. химиотер. — 2012. — Т. 14, № 1. — С. 51—58.
8.   Чернявский В.И. Бактериальные биопленки и инфекции (лекция) // Annals of Mechnikov Institute. — 2013. — № 1. — С. 86—90.
9.   Barber K.E., Werth B.J., McRoberts J.P. et al. A Novel Approach Utilizing Biofilm Time-Kill Curves To Assess the Bactericidal Activity of Ceftaroline Combinations against Biofilm-Producing Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus // Antimicrob. Agents Chemother. — 2014. — Vol. 58, № 5. — Р. 2989—2992.
10.   De la Fuente-Núñez C. Effect of Nitroxides on Swarming Motility and Biofilm Formation, Multicellular Behaviors in Pseudomonas aeruginosa // Antimicrob. Agents Chemother. — 2013. — Vol. 57, № 10. — Р. 4877—4877.
11.   Jefferson K.K., Goldmann D.A., Gerald B. Use of Confocal Microscopy To Analyze the Rate of Vancomycin Penetration through Staphylococcus aureus Biofilms // Antimicrob. Agents Chemother. — 2005. — Vol. 49, № 6. — Р. 2467—2473.
12.   Kuehl R. Furanone at Subinhibitory Concentrations Enhances Staphylococcal Biofilm Formation by luxS Repression // Antimicrob. Agents Chemother. — 2009. — Vol. 53, № 10. — Р. 4159—4166.
13.   Lin M.-H. Inhibitory Effects of 1,2,3,4,6-Penta-O-Galloyl-β-d-Glucopyranose on Biofilm Formation by Staphylococcus aureus // Antimicrob. Agents Chemother. — 2011. — Vol. 55, № 3. — Р. 1021—1027.
14.   Mihailescu R. High Activity of Fosfomycin and Rifampin against Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Biofilm In Vitro and in an Experimental Foreign-Body Infection Model // Antimicrob. Agents Chemother. — 2014. — Vol. 58, № 5. — Р. 2547—2553.
15.   Navarro G. Image-Based 384-Well High-Throughput Screening Method for the Discovery of Skyllamycins A to C as Biofilm Inhibitors and Inducers of Biofilm Detachment in Pseudomonas aeruginosa // Antimicrob. Agents Chemother. — 2014. — Vol. 58, № 2. — Р. 1092—1099.
16.   Nickel J.C., Ruseska I., Wright J.B. et al. Tobramycin Resistance of Pseudomonas aeruginosa Cells Growing as a Biofilm on Urinary Catheter Material // Antimicrob. Agents Chemother. — 1985. — Vol. 27, № 4. — Р. 619—624.
17.   Okuda K. Effects of Bacteriocins on Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Biofilm // Antimicrob. Agents Chemother. — 2013. — Vol. 57, № 11. — Р. 5572—5579.

References:

1. Berezhanskii B.V., Zhevnerev A.A. Catheter-related bloodstream infections. Klin. mikrobiol. antimikrob. khimioter. [Clinical microbiology of antimicrobial chemotherapy], 2006, vol. 8, no. 2, pp. 130—144 (In Russian).
2. Golub A.V. Bacterial biofilms - a new target therapy? Klin. mikrobiol. antimikrob. khimioter. [Clinical microbiology of antimicrobial chemotherapy], 2012, vol. 14, no. 1, pp. 23—29 (In Russian).
3. Gostev V.V., Sidorenko S.V. Bacterial biofilm formation and infections. Zhurnal infektologii. [Journal of infectology], 2010, vol. 2, no. 3, pp. 4—15 (In Russian).
4. Determination of the sensitivity of microorganisms to antibiotics [Guidelines of MUK 4.2.18-90-04], Klin. mikrobiol. antimikrob. khimioter. [Clinical microbiology of antimicrobial chemotherapy], 2004, vol. 6, no. 4, pp. 306—359 (In Russian).
5. Romanova Iu.M. The formation of biofilms - the example of social behavior of bacteria. Mikrobiologiia. [Microbiology], 2006, vol. 75, no. 4, pp. 556—661 (In Russian).
6. Sidorenko S.V. Infections associated with central venous catheter. Infektsii i antimikrob. khimioter. [Infections and antimicrobial chemotherapy], 2001, vol. 3, no. 2, pp. 47—49 (In Russian).
7. Chebotar' I.V. Antibiotic resistance of membrane bio bacteria. Klin. mikrobiol. Antimikrob. khimioter. [Clinical microbiology of antimicrobial chemotherapy], 2012, vol. 14, no. 1, pp. 51—58 (In Russian).
8. Cherniavskii V.I. Bacterial biofilms and infections (lecture). Annals of Mechnikov Institute. [Annals of Mechnikov Institute], 2013, no. 1, pp. 86—90 (In Russian).
9. Barber K.E., Werth B.J., McRoberts J.P. A Novel Approach Utilizing Biofilm Time-Kill Curves To Assess the Bactericidal Activity of Ceftaroline Combinations against Biofilm-Producing Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob. Agents Chemother., 2014, vol. 58, no. 5, pp. 2989—2992.
10. De la Fuente-Núñez C. Effect of Nitroxides on Swarming Motility and Biofilm Formation, Multicellular Behaviors in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob. Agents Chemother., 2013, vol. 57, no. 10, pp. 4877—4877.
11. Jefferson K.K., Goldmann D.A., Gerald B. Use of Confocal Microscopy To Analyze the Rate of Vancomycin Penetration through Staphylococcus aureus Biofilms. Antimicrob. Agents Chemother., 2005, vol. 49, no. 6, pp. 2467—2473.
12. Kuehl R. Furanone at Subinhibitory Concentrations Enhances Staphylococcal Biofilm Formation by luxS Repression. Antimicrob. Agents Chemother., 2009, vol. 53, no. 10, pp. 4159—4166.
13. Lin M.-H. Inhibitory Effects of 1,2,3,4,6-Penta-O-Galloyl-β-d-Glucopyranose on Biofilm Formation by Staphylococcus aureus. Antimicrob. Agents Chemother., 2011, vol. 55, no. 3, pp. 1021—1027.
14. Mihailescu R. High Activity of Fosfomycin and Rifampin against Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Biofilm In Vitro and in an Experimental Foreign-Body Infection Model. Antimicrob. Agents Chemother., 2014, vol. 58, no. 5, pp. 2547—2553.
15. Navarro G. Image-Based 384-Well High-Throughput Screening Method for the Discovery of Skyllamycins A to C as Biofilm Inhibitors and Inducers of Biofilm Detachment in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob. Agents Chemother., 2014, vol. 58, no. 2, pp. 1092—1099.
16. Nickel J.C., Ruseska I., Wright J.B. Tobramycin Resistance of Pseudomonas aeruginosa Cells Growing as a Biofilm on Urinary Catheter Material. Antimicrob. Agents Chemother., 1985, vol. 27, no. 4, pp. 619—624.
17. Okuda K. Effects of Bacteriocins on Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Biofilm. Antimicrob. Agents Chemother., 2013, vol. 57, no. 11, pp. 5572—5579.

Информация об авторах

Dronova Maria

postgtaduate student, department of pharmacology of antimicrobial agents, State institution «Institute of pharmacology and toxicology of National academy of medical sciences of Ukraine», Ukraine, Kiev