Features of the colony formation by bone marrow stromal cells of rats after hypothermia

This article is available in Russian only.

Poshelok Denis Malyshkina Svetlana Nikolchenko Olga

10.11.2015 2785

No. 10 (11)

39. Pathological physiology

Цитировать:

Пошелок Д.М., Малышкина С.В., Никольченко О.А. Особенности колониеобразования мезенхимальных стромальных клеток костного мозга крыс после гипотермии // Universum: медицина и фармакология : электрон. научн. журн. 2014. № 10 (11). URL: https://7universum.com/en/med/archive/item/1647 (дата обращения: 29.05.2026).

Прочитать статью:

Keywords: cells culture, bone marrow, colony of cells, hypothermia, rats

АННОТАЦИЯ

В культуре мезенхимальных стромальных клеток (МСК) костного мозга (КМ), выделенного из костей у молодых и старых крыс на 7 и 28 сутки после действия гипотермии, изучена способность клеток образовывать колонии. Показано, что гипотермия угнетает пролиферативную активность МСК КМ. В культивированных МСК КМ опытных животных на 7 сутки выявлено достоверное уменьшение количества колоний и клеток в них. Более выражены изменения в культуре МСК КМ старых животных. На 28 сутки после гипотермии различия между опытными и контрольными культурами были незначительными.

ABSTRACT

The ability of cells to form colonies in the culture of bone marrow stromal cells (BMSC), isolated from the bone of young and old rats at 7^th and 28^th days after the hypothermia was studied. It was shown, that hypothermia inhibits the proliferation of BMSC. The number of colonies and cells in experimental cultures of BMSC at 7^th day were significant decreased. The changes were statistically increased in the culture of cells of old animals. The differences between the experimental and control cultures on 28^th day after hypothermia weren’t observed.

Список литературы:

1. Бабийчук В.Г. Количественная оценка антиген-специфических клеток в крови человека после ритмических холодовых воздействий // Проблемы криобиологии. — 2009. — Т. 19, № 2. — С. 143—153.
2. Гололобов В.Г., Деев Р.В. Стволовые стромальные клетки и остеобластический клеточный дифферон // Морфология. — 2003. — Т. 123, № 1. — С. 9—19.
3. Горская Ю.Ф., Лациник Н.В., Шуклина Е.Ю. и др. Возрастные изменения в популяции стромальных остеогенных клеток-предшественников // Российский иммунологический журнал. — 2000. — Т. 5, № 2. — С. 149—155.
4. Деев Р.В., Цупкина Н.В., Гололобов В.Г. и др. Влияние трансплантированной культуры остеогенных клеток костного мозга на репаративный остеогистогенез в области дефекта теменных костей // Цитология. — 2008. — Т. 50, № 4. — С. 293—301.
5. Ильина В.К., Прохорова Е.В. Клеточно-генетические особенности стромальных клеток костного мозга при различных формах остеопороза / 3-й симп. по остеопорозу: тезисы докладов. — СПб., 2000. — С. 65.
6. Киреев А.А. Регенерация костной ткани при холодовой травме в условиях лечения изотиорбамином: автореф. дис. … канд. мед. наук: спец. 14.00.22. — Якутск, 2006. — 21 с.
7. Коваленко В.Н., Лысенко И.В., Панченко Л.М. Культура стволовых стромальных клеток костного мозга человека для изучения прямого влияния фармакологических препаратов при остеоартрозе // Украинский ревматологический журнал. — 2006. — Т. 25, № 3. — С. 45—48.
8. Колінко Я.О. Стан провідникового апарату та мікроциркуляторного русла сідничного нерва щура на сьому добу після дії загальної глибокої гіпотермії // Украинский морфологический альманах. — 2010. — Т. 8, № 2. — С. 91—94.
9. Лебединская О.В., Горская Ю.Ф., Шуклина Е.Ю. и др. Возрастные изменения количества стромальных клеток-предшественников в костном мозге животных // Морфология. — 2004. — Т. 126, № 6. — С. 46—49.
10. Методические рекомендации по получению, культивированию и использованию в научных и производственных ветеринарных лабораториях первичных, перевиваемых и диплоидных культур клеток живого происхождения. — М., 1978. — 30 с.
11. Пошелок Д.М., Дедух Н.В., Малишкина С.В. Влияние гипотермии на ремоделирование трабекулярной кости крыс / Сборник статей по материалам XXXIII международной научно-практической конференции «Современная медицина: актуальные вопросы». — Новосибирск, 2014. — Т. 7, № 33. — С. 70—85.
12. Пошелок Д.М., Малышкина С.В. Структурная организация компактной кости после общей гипотермии // Таврический медико-биологический вестник. — 2013. — Т. 16, № 1. — С. 197—201.
13. Родионова Н.В. Цитологічні механізми перебудов у кістках при гіпокінезії та мікрогравітації. — Київ: ДНВП «Видавництво «Наукова думка» НАН України», 2006. — 239 с.
14. Шалимов В.А. Некоторые особенности межклеточных цитоплазмо-цитоплазматических, ядерно-цитоплазматических и ядерно-ядерных соединений в костном мозге контрольных крыс, подвергающихся воздействию гиподинамии. — Киев: Знание Украины, 2004. — 28 с.
15. Baylor K., Stecker M.M. Peripheral nerve at extreme low temperatures 2: pharmacologic modulation of temperature effects // Cryobiology. — 2009. — Vol. 59, № 1. — P. 12—18.
16. Bennet L., Roelfsema V., George S. et al. The effect of cerebral hypothermia on white and grey matter injury induced by severe hypoxia in preterm fetal sheep // J. Physiol. — 2007. — Vol. 578, Pt. 2. — P. 491—506.
17. Вuckwalter J., Glimcher M., Cooper R. et al. Bone biology// J. Bone Jоint Surg. 1995. — V. 77-A, № 8. — Р. 1256—1275.
18. D'Ippolito G., Schiller P.C., Ricordi C. et al. Age-related osteogenic potential of mesenchymal stromal stem cells from human vertebral bone marrow // J. Bone Miner. Res. — 1999. — Vol. 14, № 7. — P. 1115—1122.
19. Duebener L.F., Hagino I., Sakamoto T. et al. Effects of pH management during deep hypothermic bypass on cerebral microcirculation: alpha-stat versus pH-stat // Circulation. — 2002. — Vol. 106, № 12. — Suppl. 1. — P. 103—108.
20. Nishida S., Endo N., Yamagiwa H. et al. Number of osteoprogenitor cells in human bone marrow markedly decreases after skeletal maturation // J. Bone Miner. Metab. — 1999. — Vol. 17, № 3. — P. 171—177.
21. Robling A.G., Castillo A.B., Turner C.H. Biomechanical and molecular regulation of bone remodeling // Annu. Rev. Biomed. Eng. — 2006. — Vol. 8. — P. 455—498.

References:

1. Babiichuk V.G. Quantification of antigen-specific cells in human blood after rhythmic cold exposures. Problemy kriobiologii. [Problems of cryobiology], 2009, vol. 19, no. 2, pp. 143—153 (In Russian).
2. Gololobov V.G., Deev R.V. Stem cells and osteoblastic stromal cell differon. Morfologiia. [Morphology], 2003, vol. 123, no. 1, pp. 9—19 (In Russian).
3. Gorskaia Iu.F., Latsinik N.V., Shuklina E.Iu. Age-related changes in the population of stromal osteogenic precursor cells. Rossiiskii immunologicheskii zhurnal. [Russian immunological journal], 2000, vol. 5, no. 2, pp. 149—155 (In Russian).
4. Deev R.V., Tsupkina N.V., Gololobov V.G. Effect of transplanted culture of osteogenic bone marrow cells on reparative osteogistogenez defect in the parietal bones. Tsitologiia. [Cell biology], 2008, vol. 50, no. 4, pp. 293—301 (In Russian).
5. Il'ina V.K., Prokhorova E.V. Cellular genetic characteristics of bone marrow stromal cells in various forms of osteoporosis. 3rd symp. osteoporosis: abstracts. St. Petersburg, 2000. pp. 65 (In Russian).
6. Kireev A.A. The regeneration of bone tissue in cold injury under treatment izotiorbaminom. Cand. med. sci. diss. Yakutsk, 2006. 21 p. (In Russian).
7. Kovalenko V.N., Lysenko I.V., Panchenko L.M. Culture of stromal stem cells of bone marrow to study the direct influence of pharmacological agents in osteoarthritis. Ukrainskii revmatologicheskii zhurnal. [Ukrainian journal of rheumatology], 2006, vol. 25, no. 3, pp. 45—48 (In Russian).
8. Kolinko Ja.O. Condition conductor system and the microcirculation of rat sciatic nerve on the seventh day after the general action of deep hypothermia. Ukraynskyj morfologycheskyj al'manah. [Ukrainian morphological almanac], 2010, vol. 8, no. 2, pp. 91—94 (In Ukrainian).
9. Lebedynskaja O.V., Gorskaja Ju.F., Shuklyna E.Ju. Age-related changes in the number of stromal cell precursors in the bone marrow of animals. Morfologiia. [Morphology], 2004, vol. 126, no. 6, pp. 46—49 (In Russian).
10. Guidelines for the preparation, cultivation and use in scientific and industrial laboratories, veterinary primary transplanted and diploid cell cultures living origin. Moscow, 1978. 30 p. (In Russian).
11. Poshelok D.M., Dedukh N.V., Malishkina S.V. Effect of hypothermia on trabecular bone remodeling in rats. Collection of articles on materials XXXIII of International scientific-practical conference "Modern medicine: topical issues". Novosibirsk, 2014, vol. 7, no. 33, pp. 70—85 (In Russian).
12. Poshelok D.M., Malyshkina S.V. The structural organization of compact bone after total hypothermia. Tavricheskii mediko-biologicheskii vestnik. [Tauride biomedical newsletter], 2013, vol. 16, no. 1, pp. 197—201 (In Russian).
13. Rodionova N.V. Cytological mechanisms of rearrangements in bone while hypokinesia and microgravity. Kiev, DNVP «Vydavnyctvo «Naukova dumka» NAN Ukrai'ny» Publ., 2006. 239 p. (In Ukrainian).
14. Shalimov V.A. Some features of cell-cytoplasm, cytoplasmic, nuclear-cytoplasmic and nuclear-nuclear compounds in bone marrow control rats exposed to physical inactivity. Kiev, Znanie Ukrainy Publ., 2004. 28 p. (In Russian).
15. Baylor K., Stecker M.M. Peripheral nerve at extreme low temperatures 2: pharmacologic modulation of temperature effects. Cryobiology, 2009, vol. 59, no. 1, pp. 12—18.
16. Bennet L., Roelfsema V., George S. The effect of cerebral hypothermia on white and grey matter injury induced by severe hypoxia in preterm fetal sheep. J. Physiol., 2007, vol. 578, pt. 2, pp. 491—506.
17. Вuckwalter J., Glimcher M., Cooper R. Bone biology. J. Bone Jоint Surg., 1995, vol. 77-A, no. 8, pp. 1256—1275.
18. D'Ippolito G., Schiller P.C., Ricordi C. Age-related osteogenic potential of mesenchymal stromal stem cells from human vertebral bone marrow. J. Bone Miner. Res., 1999, vol. 14, no. 7, pp. 1115—1122.
19. Duebener L.F., Hagino I., Sakamoto T.. Effects of pH management during deep hypothermic bypass on cerebral microcirculation: alpha-stat versus pH-stat. Circulation, 2002, vol. 106, no. 12, suppl. 1, pp. 103—108.
20. Nishida S., Endo N., Yamagiwa H. Number of osteoprogenitor cells in human bone marrow markedly decreases after skeletal maturation, J. Bone Miner. Metab., 1999, vol. 17, no. 3, pp. 171—177.
21. Robling A.G., Castillo A.B., Turner C.H. Biomechanical and molecular regulation of bone remodeling. Annu. Rev. Biomed. Eng., 2006, vol. 8, pp. 455—498.

Информация об авторах

Poshelok Denis

Junior Research scientist of the Laboratory of Experimental Modeling, SI “Sitenkо Institute of Spine and Joints Pathology of National Ukraine Academy of Medical Sciences”, Ukraine, Kharkov

Malyshkina Svetlana

Candidate of Biology Sciences, Head of the Laboratory of Experimental Modeling, SI “Sitenkо Institute of Spine and Joints Pathology of National Ukraine Academy of Medical Sciences”, Ukraine, Kharkov

Nikolchenko Olga

Candidate of Biology Sciences, Junior Researcher of the Laboratory of Experimental Modeling, SI “Sitenkо Institute of Spine and Joints Pathology of National Ukraine Academy of Medical Sciences”, Ukraine, Kharkov