Международный
научный журнал

Подбор методики выделения бактериофагов рода Proteus


Selection of the technique of allocation of bacteriophages of the sort Proteus

Цитировать:
Подбор методики выделения бактериофагов рода Proteus // Universum: Химия и биология : электрон. научн. журн. Феоктистова Н.А. [и др.]. 2017. № 7(37). URL: http://7universum.com/ru/nature/archive/item/4942 (дата обращения: 11.12.2019).
 
Прочитать статью:

Keywords: bacteriophage, Proteus, allocation, method, induction, bacteria

АННОТАЦИЯ

В статье описаны результаты исследований по подбору максимально результативной методики для выделения бактериофагов, специфичныхбактериям родаProteus. Установлено, что методом индукции (воздействие ультрафиолетовых лучей) выделить бактериофаги не удалось: профаг у 16 исследованных бактерий рода Proteus не был выявлен. Методика выделения фагов из объектов окружающей среды дала положительные результаты - из 94 проб сточных вод, фекалий, смывов с клеток, почвы с территории ферм было выделено 8 бактериофагов, специфичных к бактериям рода Proteus. Была модифицирована методика выделения бактериофагов: при выделении фага из объектов ветеринарно-санитарного надзора по классической методике Гольдфарба Д.М. (1961) этап высева цетрифугата методом агаровых слоев по Gracia (1936) был заменен в протоколе исследований на этап высева методом Отто «стекающая капля».

ABSTRACT

In article results of researches on selection of the most productive technique for allocation of the bacteriophages specific to sort Proteus bacteria are described. It is established that the induction method (influence of ultraviolet rays) hasn't succeeded to allocate bacteriophages: the pro-phage at 16 studied bacteria of the sort Proteus hasn't been revealed. The technique of allocation of phages from objects of the environment has yielded positive results - from 94 tests of sewage, excrements, washouts from cages, soils from the territory of farms 8 bacteriophages specific to sort Proteus bacteria have been allocated. The technique of separation of bacteriophages was modified: in case of separation of a phage from objects of veterinary sanitary inspection by a classical technique of Goldfarb D.M. (1961) the stage of seeding of a tsetrifugat by method of agar layers on Gracia (1936) was replaced in the protocol of researches with a seeding stage with Otto's method "the refluxing drop".

 

По литературным данным бактерии широко распространены во внешней среде и обладают высокой устойчивостью к факторам внешней среды, в незначительном количестве обитают в кишечнике здоровых животных, человека и птиц, часто становятся причиной болезни молодняка сельскохозяйственных животных и птицы, находящихся в иммунодепрессивном состоянии и наиболее подверженных стрессам [1, с. 23; 2, с. 30]. Известно, что вспышки протейной инфекции регистрируются преимущественно спорадически, в случаях эпизоотии в стаде,  бактерии рода Proteus играют сопряженную роль секундарной инфекции при смешанном (ассоциативном) инфекционном поражении [5, с.174; 6, с. 35; 10, с. 77]. Бактерии рода Proteus – прямые, подвижные грамотрицательные палочки 0,4-0,8х1-3 мкм, большинство штаммов обладают способностью к роению, образуя на скошенной поверхности агара вуалеобразный голубоватый налет с характерным гнилостным запахом, они отличаются от других энтеробактерий наличием фенилаланиндезаминазы [11, с.8].

Для диагностики, лечения и профилактики дисбиозов, возбудителем которых являются протеи в смешанной или монокультурах, в медицинской практике применяются фаговые биопрепараты. В ветеринарии данные методики не нашли широкого распространения, что связано с ограниченным количеством специфических бактериофагов на фармацевтическом рынке.

Цель и задачи исследований

Цель работы – выделение фагов, специфичных для бактерий рода Proteus, из патологического материала и объектов санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям, которые могут быть использованы с целью конструирования фагового биопрепарата для диагностики, профилактики и лечения дисбиозов, возбудителем которых являются протеи в смешанной или монокультурах, и их селекция.

Для выполнения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

-  провести эксперименты по выделению бактериофагов методом индукции на штаммах Proteus;

-  провести эксперименты по выделению бактериофагов Proteus из объектов окружающей среды;

-  подобрать оптимальные параметры культивирования выделенных бактериофагов и способы очистки бактериофагов от индикаторной культуры.

Методика исследований

Штаммы бактерий рода Proteusбыли выделены коллективом авторов изпатологического материала и фекалии от телят, поросят и птицы (куры и утки) с клиническими признаками дисбактериоза, фекалии и смывы животноводческих и птицеводческих хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям Ульяновской и Самарской областей. Для исследований было взято 94 пробы патологического материала (трупы телят, поросят и кур, объекты санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям (сточные воды, фекалии, смывы с клеток, почва с территории животноводческих ферм) Ульяновской, Самарской и Пензенской областей).

Выделение бактериофагов и подбор оптимальных параметров их культивирования проводили с использованием методик, опробированных сотрудниками кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ ФГБОУ ВО Ульяновская ГСХА [9, с.26; 12, с. 88; 13, с.186; 14, с. 197]. В исследованиях применяли питательный бульон ТУ 10-02-02-789-176-94 (ООО «БиоКомпас-С», РФ), питательный агар для культивирования микроорганизмов  сухой (ГРМ-агар) ТУ 9398-020-78095326-2006 (ФБУН ГНЦ ПМБ, РФ), генцианвиолет 548-62-9 (ЗАО «Вектон», РФ), трихлорметан стабилизированный 0,6-1 % этанола (хлороформ) ч.д.а. ТУ 2631-066-44493179-01. Контроль специфической активности бактериофагов проводили с помощью специально подобранных наборов контрольных штаммов. Концентрацию микробных клеток определяли с помощью оптического стандарта мутности (ОСО 42-28-85 на 10 ед. производства ГИСК им. Л.А. Тарасевича).

Результаты исследований

В первой серии экспериментов на 16 культур бактерий рода Proteus, которые мы исследовали как «лизогенные», воздействовали индуцирующим фактором (применяли воздействие на бактерии ультрафиолетовых лучей).

Анализ литературных данных свидетельствует о том, что при действии на лизогенные культуры индуцирующим фактором продукция фага в значительной степени возрастает, поэтому применяя данную методику удается выявить бактериофаг в значительно большем проценте случаев, чем при изучении только спонтанной его продукции [3, с. 8; 4, с.10].

В качестве источника ультрафиолетовых лучей применялась бактерицидная лампа, 80 % энергии которой приходится на длину волны 2537 Ǻ. Исследуемые культуры в период эксперимента (16 культур бактерий, идентифицированных как Proteus) находились в экспоненциальной фазе роста. Суточная культура бактерий разводилась в соотношении 1:100 в фосфатном буфере с рН 7,6. Разведение бактерий в объеме 2 мл помещали в чашку Петри и облучали в течение 20 (25, 30, 35, 40) секунд на расстоянии 40 (45, 50, 55, 60) см. Затем облученные культуры рода Proteus засевались на мясо-пептонный бульон (МПБ) комнатной температуры (20-22 0С) в соотношении 1:100. Эксперимент проводился в полузатемненном помещении с целью предохранения облученных бактерий рода Proteus от фотореактивации. Посевы инкубировали при 36±1 0С в течение 6,5-7,0 часов, после чего делали высев методом агаровых слоев по Gracia (1936).

Известно, что лизогения широко распространена среди всех систематических групп микроорганизмов, но нам не удалось выявить профаг у выделенных культур рода Proteus.

Второй этап исследований был посвящен выделению бактериофагов изобъектов ветеринарно-санитарного надзора. Для исследований был произведен отбор 94 проб патологического материала (трупы телят, поросят и кур, объекты ветеринарно-санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям (сточные воды, фекалии, смывы с клеток, почва с территории животноводческих ферм)).

Первоначально готовили разведения из объектов исследований в МПБ в соотношении 1:10, добавляли в концентрации 104 КОЕ /мл по 1,0 мл каждого из 16 штаммов бактерий рода Proteus. Колбы с пробами ставили в термостат на 24 часа при температуре 36±1 0С. Затем пробы фильтровали через ватно-марлевый фильтр для освобождения от механических примесей. После этого содержимое колбы разливали в стерильные пробирки, центрифугировали при 3000 об./мин в течение 30 минут, далее прогревали в водяной бане при 62±2 0С в течение 30 минут с целью подавления роста грамотрицательных бактерий.

Каждый исследуемый фильтрат исследовался нами на наличие фага методом Отто «стекающая капля».

Результаты оценивали следующим образом: - отсутствие лизиса;

+ лизис по ходу стекания капли;

++ лизис по ходу стекания капли и наличие стерильных пятен;

+++ наличие стерильного пятна и зон лизиса.

Установлено, что на газоне культур 16 культур бактерий рода Proteus выявлены зоны лизиса, оцененные в +, ++ и +++ (один, два и три креста) из проб сточных вод 1 (на индикаторной культуреProteusvulgaris1 - зона лизиса ++), из пробы почвы 2 (на культуреProteusvulgaris 3 – зона лизиса - +++), из фекалий КРС (на культуреProteusvulgaris 13 – зона лизиса - +); смыв с клетки (на индикаторной культуре Proteusvulgaris 16 - зона лизиса была оценена на +++); сточные воды 12 (на культуреProteusvulgaris 33 – зона лизиса - +); сточные воды 5 (на культуреProteusvulgaris 28 – зона лизиса - ++); из пробы почвы 4 (на культуреProteusvulgaris 38 – зона лизиса - ++); фекалии свиней (на культуреProteusmirabilis12 – зона лизиса -  +).

При выделении фага из объектов ветеринарно-санитарного надзора по классической методике Гольдфарба Д.М. (1961) [3, с. 6] этап высева цетрифугата методом агаровых слоев по Gracia (1936) был заменен в протоколе исследований на этап высева методом Отто «стекающая капля». Это было сделано с целью экономии расходных материалов и снижения трудозатрат. Также нами было установлено, что при первичном выявлении бактериофага метод Отто позволяет четко видеть его наличие или отсутствие, в то время как метод агаровых слоев по Gracia (1936) затрудняет этап «визуального выявления бактериофага на газоне культуры». Для подтверждения мы провели эксперименты, заключающиеся в том, что каждый из 8 фильтратов был исследован на наличие фага методом агаровых слоев по Gracia (1936).

Установлено, что на газоне культур Proteusvulgaris 1, Proteusvulgaris 3, Proteusvulgaris 13, Proteusvulgaris 16, Proteusvulgaris 33, Proteusvulgaris 28, Proteusvulgaris 38, Proteusmirabilis12 выявлены зоны лизиса. Затраты на постановку эксперимента в несколько раз больше и при аналогичном результате, что и при применении метода Отто.

Нами из 94 проб объектов ветеринарно-санитарного надзора было выделено 8 бактериофагов, специфичных для штаммовProteusvulgarisи Proteusmirabilis.

Заключение

Были проведены исследования по выявлению бактериофагов, специфических к бактериям ProteusvulgarisиProteusmirabilisметодом индукции из выделенных нами ранее протейных культур. Были получены отрицательные результаты, которые не расходятся с данными исследователей, занимавшихся выделением бактериофагов семейства Enterobacteriaceae, утверждающих, что наиболее перспективным является методика выделения бактериофагов из объектов окружающей среды [7, с. 183; 8, с. 85; 11, с. 10].

Из 94 проб объектов ветеринарно-санитарного надзора животноводческих и птицеводческих помещений из хозяйств, неблагополучных по желудочно-кишечным заболеваниям, было выделено 8 бактериофагов, специфичных к бактериям рода Proteus. Установлено, что объектами для выделения вирулентных бактериофагов родаProteusявляютсясточные воды, фекалии, смывы с клеток, почва с территории животноводческих ферм.

 

Исследования проводятся при поддержке государства в лице ФГБУ «Российский фонд фундаментальных исследований» по научному проекту «Геномика и биология кандидатных бактериофагов для терапии энтеробактериальных инфекций в ветеринарной медицине» №16-44-732038/16 от 03.11.2016 г.


Список литературы:

1. Войтенко, Л.Г. Влияние микробного фактора на возникновение скрытого эндометрита у коров / Л.Г. Войтенко, Т.И. Лапина, И.А. Головань, Д.И. Шилин // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. - 2015. - № 1. - С. 23-25.
2. Золотухин, С.Н. Малоизученные энтеробактерии и их роль в патологии животных / С.Н. Золотухин. – Ульяновск: Копиринг, 2004. − С.29–37 (130с).
3. Золотухин, С.Н. Создание и разработка схем применения диагностических биопрепаратов на основе выделенных и изученных бактериофагов энтеробактерий / автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук / Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия. – Ульяновск, 2007. – С. 5-8 (39с).
4. Климушкин, Е.И. Выделение бактериофагов, специфичных к Bacillus anthracis / Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова, Д.А. Васильев [и др.] // БиоКиров-2015: сборник материалов III Международного форума. [Электронный ресурс]. - 2015. - С. 10-12.
5. Кураззева, А.В. Состояние кишечного микробиоценоза телят при острых кишечных расстройствах / А.В. Куразеева, В.А. Коноплёв, Л.А. Лаврушина, И.С. Шульга // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. - 2015. - № 12. - С. 173-177.
6. Куриленко, А.Н. Бактериальные и вирусные болезни молодняка сельскохозяйственных животных / А.Н. Куриленко, В.Л. Крупальник, Н.В. Пименов. - М.: Колосс, 2005. – С. 35-36 (296 с).
7. Пульчеровская, Л.П. Бактериофаги Citrobacter в окружающей среде / Л.П. Пульчеровская, Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, Е.О. Ефрейторова // Агробизнес и экология. - 2015. - Т. 2. - № 2. - С. 183-185.
8. Пульчеровская, Л.П. Выделение и селекция бактериофагов рода Citrobacter / Л.П. Пульчеровская, С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев // Вестник ветеринарии. - 2002. - № 5. - С. 85.
9. Романова, Н.А. Сравнительная эффективность методов выделения фагов Bacillus megaterium / Н.А. Романова, Н.А. Феоктистова, С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев [и др.] // Вестник ветеринарии. – 2013. - № 1 (64). – С. 26-27.
10. Сбойчаков, В.Б. Эпидемиология, клиника и лабораторная диагностика бактериальных и вирусных диарей / В.Б. Сбойчаков, С.М. Захаренко, Ю.П. Финогеев, В.Ф. Крумгольц // Лечение и профилактика. - 2012. - № 3. - С. 77-81.
11. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение биологических свойств бактериофагов рода Proteus, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров практического применения: автореф. дис. …канд. биол. наук: 03.00.07, 03.00.23 / Феоктистова Наталья Александровна. – Саратов, 2006. – С.8–10 (21с).
12. Феоктистова, Н.А. Методы выделения бактериофагов рода Bacillus / Н.А. Феоктистова, В.А. Макеев, М.А. Юдина, А.И. Калдыркаев // Вестник ветеринарии. - 2011.- № 4 (59). - С. 88-89.
13. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов бактерий Bacillus subtilis / Н.А. Феоктистова / В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, НИИЦМиБ, 2013. - С. 186-197. (315 с.).
14. Юдина, М.А. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов бактерий вида Bacillus mesentericus / М.А. Юдина, Н.А. Феоктистова // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 197-211. (315 с.)

Информация об авторах:

Феоктистова Наталья Александровна Feoktistova Natalya

канд. биол. наук, доцент кафедры «Микробиология, вирусология, эпизоотология и ветеринарно-санитарная экспертиза» ФГБОУ ВО Ульяновская ГСХА 432017, г. Ульяновск, бульвар Новый Венец, 1

candidate of biological sciences, associate professor "Microbiology, virology, epizootologiya and veterinary and sanitary examination" FGBOOU WAUGH Ulyanovsk GSHA 432017, Ulyanovsk, Novy Venets Boulevard, 1


Васильев Дмитрий Аркадьевич Vasilyev Dmitry

д-р биол. наук, профессор, заведующий кафедрой «Микробиология, вирусология, эпизоотология и ветеринарно-санитарная экспертиза» ФГБОУ ВО Ульяновская ГСХА 432017, г. Ульяновск, бульвар Новый Венец, 1

doctor of biological sciences, professor, head of the department "Microbiology, virology, epizootologiya and veterinary and sanitary examination" FGBOOU WAUGH Ulyanovsk GSHA 432017, Ulyanovsk, Novy Venets Boulevard, 1


Мастиленко Андрей Владимирович Mastilenko Andrey

канд. биол. наук, доцент кафедры «Микробиология, вирусология, эпизоотология и ветеринарно-санитарная экспертиза» ФГБОУ ВО Ульяновская ГСХА 432017 г. Ульяновск, бульвар Новый Венец, 1

candidate of biological sciences, associate professor, Department of Microbiology, Virology, epizootology and veterinary-sanitary examination of the Ulyanovsk State Agricultural Academy 432017, Russia, Ulyanovsk, Boulevard New Crown, 1


Золотухин Сергей Николаевич Zolotukhin Sergei

д-р биол. наук, профессор, кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО Ульяновская ГСХА 432017 г. Ульяновск, бульвар Новый Венец, 1

doctor of biological sciences, professor, Department of Microbiology, Virology, epizootology and veterinary-sanitary examination of the Ulyanovsk State Agricultural Academy 432017, Russia, Ulyanovsk, Boulevard New Crown, 1


Читателям

Информация о журнале

Выходит с 2013 года

ISSN: 2311-5459

Св-во о регистрации СМИ: 

ЭЛ №ФС77-55878 от 17.06.2013

ПИ №ФС77-66239 от 01.07.2016

Скачать информационное письмо

Включен в перечень ВАК Республики Узбекистан

Размещается в:

doi:

The agreement with the Russian SCI:

cyberleninka

google scholar

Ulrich's Periodicals Directory

socionet

Base

ROAR

OpenAirediscovery

CiteFactor

 

Поделиться

Лицензия Creative CommonsЯндекс.Метрика© Научные журналы Universum, 2013-2019
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Непортированная.